Kontrast



Reavahe




Teksti suurus




Hoolivus, Uuendusmeelsus, Pädevus ja Usaldusväärsus

Vereloome kasvajate molekulaardiagnostilised uuringud

Immuunanalüüsi osakond

Vereloome rakkude leukeemilise transformeerumise peamiseks mehhanismiks on geneetiliste muutuste teke. Kui muutused tekivad geenides, mis mõjutavad raku jagunemist või diferentseerumist, siis väljub raku areng kontrolli alt. Peamisteks muutusteks on erinevate kromosoomide vahelised translokatsioonid, kromosoomi osade deletsioonid ja inversioonid, kuid on teada ka väiksemaid mutatsioone ning muutusi geenide ekspressioonimustris. Teatud kindlate geenide muutumine põhjustab kindla fenotüübiga vähirakkude tekkimise. Geneetilise muutuse teadmine võimaldab kinnitada diagnoosi, valida ravi ning hinnata prognoosi. Kindla molekulaarse markeri olemasolul on võimalik edaspidi jälgida haiguse kulgu ning ravi efektiivsust.

PCR analüüsi näidustused:

  1. Diagnoosi kinnitamine/täpsustamine
  2. Remissiooni ja retsidiivi hindamine
  3. Transplantatsioonieelne ning -järgne kontroll
  4. Mõõdetava residuaalse haiguse (MRD) jälgimine.

PCR meetod on kõige tundlikum ja spetsiifilisem meetod mõõdetava residuaalse haiguse jälgimiseks. Reaalaja polümeraasi ahelreaktsiooni puhul kasutatakse leukeemiamarkerite suhtelist kvantiteerimist, s.t konkreetsel patsiendil määratakse leukeemiaspetsiifilise markeri hulka house-keeping ehk kontrollgeeni suhtes. Ühendlaboris kasutatavad meetodid on välja töötatud vastavalt rahvusvahelise European LeukemiaNet (ELN) standardiseeritud juhistele.

Hematoloogiliste somaatiliste mutatsioonide mRNA (paneel)
(B,Bm-Hem somatic mut mRNA panel)

Immuunanalüüsi osakond

Antud analüüs on mõeldud enamlevinud leukeemiaspetsiifiliste mutatsioonide sõeluuringuks. Uuringu teostamiseks kasutatakse HemaVision kit analüüsikomplekti, mis võimaldab tuvastada 32 erinevat kromosomaalset aberratsiooni ning nende erinevaid murrupunkte. Erinevad aberratsioonid on seotud erinevate leukeemia vormidega (ALL, AML, KML) ning omavad nii diagnostilist kui ka prognostilist väärtust.

HemaVision kit’iga saab tuvastada järgmisi aberratsioone:  

NimetusLaiendatud nimetus
del(1)(p32) STIL::TAL1del(1)(p32) STIL::TAL1
inv(16) CBFB::MYH11inv(16)(p13q22) CBFB::MYH11
t(1;11) MLL::EPS15t(1;11)(p32;q23) MLL::EPS15
t(1;11) MLL::MLLT11t(1;11)(q21;q23) MLL::MLLT11
t(1;19) TCF3::PBX1t(1;19)(q23;p13) TCF3::PBX1
t(3;5) NPM1::MLF1t(3;5)(q25.1;q35) NPM1::MLF1
t(3;21) RUNX1::EVI1t(3;21)(q26;q22) RUNX1::EVI1
t(3;21) RUNX1::MECOMt(3;21)(q26;q22) RUNX1::MECOM
t(3;21) RUNX1::RPL22P1t(3;21)(q26;q22) RUNX1::RPL22P1
t(4;11) MLL::AFF1t(4;11)(q21;q23) MLL::AFF1
t(5;12) ETV6::PDGFRBt(5;12)(q33;p13) ETV6::PDGFRB
t(5;17) NPM1::RARAt(5;17)(q35;q12) NPM1::RARA
t(6;9) DEK::NUP214t(6;9)(p23;q34) DEK::NUP214
t(6;11) MLL::MLLT4t(6;11)(q27;q23) MLL::MLLT4
t(8;21) RUNX1::RUNX1T1t(8;21)(q22;q22) RUNX1::RUNX1T1
t(9;9) SET::NUP214t(9;9)(q34;q34) SET::NUP214
t(9;11) MLL::MLLT3t(9;11)(p22;q23) MLL::MLLT3
t(9;12) ETV6::ABL1t(9;12)(q34;p13) ETV6::ABL1
t(9;22) BCR::ABL1 (p190)t(9;22)(q34;q11) BCR::ABL1 (m-bcr, p190)
t(9;22) BCR::ABL1 (p230)t(9;22)(q34;q11) BCR::ABL1 (μ-bcr, p230)
t(9;22) BCR::ABL1 (p210)t(9;22)(q34;q31) BCR::ABL1 (M-bcr, p210)
t(10;11) MLL::MLLT10t(10;11)(p12;q23) MLL::MLLT10
t(11;17) MLL::MLLT6t(11;17)(q23;q21) MLL::MLLT6
t(11;17) ZBTB16::RARAt(11;17)(q23;q12) ZBTB16::RARA
t(11;19) MLL::ELLt(11;19)(q23;p13.3) MLL::ELL
t(11;19) MLL::MLLT1t(11;19)(q23;p13.3) MLL::MLLT1
t(12;21) ETV6::RUNX1t(12;21)(p13;q22) ETV6::RUNX1
t(12;22) ETV6::MN1t(12;22)(p13;q11/12) ETV6::MN1
t(15;17) PML::RARAt(15;17)(q24;q12) PML::RARA
t(16;21) FUS::ERGt(16;21)(p11;q22) FUS::ERG
t(17;19) TCF3::HLFt(17;19)(q22;p13) TCF3::HLF
t(X;11) MLL::FOXO4t(X;11)(q13;q23) MLL::FOXO4

Kui positiivseks osutub selline aberratsioon, mida on võimalik määrata kvantitatiivse reaalaja polümeraasi ahelreaktsiooniga, siis on edaspidi võimalik teostada ka kvantitatiivne analüüs. Teisi leitud mutatsioone saab jälgida sama meetodiga. Kuna test on kvalitatiivne, siis ei sobi see mõõdetava residuaalse haiguse hindamiseks.

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 48 tundi

Analüüsimeetod: kvalitatiivne reaalaja polümeraasi ahelreaktsioon (PCR)

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 5 tööpäeva jooksul

Vastuse vorm: positiivne/negatiivne (iga aberratsiooni kohta eraldi)

Näidustus ja kliiniline tähendus

Diagnoosi täpsustamine/selgitamine, prognoosi hindamine.

Müeloproliferatiivsed haigused

JAK2 geeni p.V617F mutatsiooni DNA hulk
(B,Bm- JAK2 p.V617F DNA QN)

Immuunanalüüsi osakond

Müeloproliferatiivseid haigusi, nagu tõelist polütsüteemiat (PV), essentsiaalset trombotsüteemiat (ET) ja idiopaatilist müelofibroosi (IMF), iseloomustab klonaalne ühe või mitme müeloidse rakurea proliferatsioon, mis omakorda toimub tsütokiini hüpersensitiivsuse tõttu. Janus-türosiinkinaas-2 p.V617F mutatsiooni (JAK2 p.V617F) on leitud suurel hulgal PV ja ET diagnoosiga patsientidel ning vähemal määral IMF-ga patsientidel. JAK2 kuulub normaalselt raku signaalraja molekulide hulka ja osaleb geenide transkriptsiooni aktiveerimisel. Müeloidsetes tüvirakkudes muteerunud JAK2 viib aga kontrollimatu müeloidse rakurea proliferatsioonini. JAK2 mutatsiooni tuvastamine reaalaja polümeraasi ahelreaktsiooniga võimaldab kroonilisi müeloproliferatiivseid haigusi paremini diagnoosida, nt eristada primaarset polütsüteemiat ja sekundaarset erütrotsütoosi ning essentsiaalset ja reaktiivset trombotsütoosi.

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 7 päeva

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 5 tööpäeva jooksul

Analüüsimeetod: kvantitatiivne reaalaja polümeraasi ahelreaktsioon (PCR)

Vastuse vorm: JAK2 V617F mutatsiooniga ja wild-type DNA koopiate arvu suhe %-des.

Näidustus ja kliiniline tähendus

Müeloproliferatiivsete haiguste diferentsiaaldiagnostika ja ravi tulemuslikkuse jälgimine.

t(9;22) BCR::ABL1 (p210 KML) translokatsiooni mRNA
(B,Bm-t(9;22) BCR::ABL1 (p210 KML) mRNA)

Immuunanalüüsi osakond

Rohkem kui 95%-l juhtudel esineb kroonilise müeloidleukeemia (KML) patsientidel Philadelphia kromosoom ehk kromosomaalne translokatsioon t(9;22)(q34;q11).

Translokatsiooni (9;22) korral on 9. kromosoomil murd ABL1 geeni kohalt, ühinedes 22. kromosoomiga BCR geeni keskelt. Selle tulemusel tekib liitgeen BCR::ABL1. Sellelt geenilt toodetud liitvalgu BCR::ABL1 funktsionaalse türosiinkinaasi osa on pidevalt aktiveeritud ning omab seetõttu kriitilist rolli leukeemia patogeneesis. Sõltuvalt murdepunkti asukohast bcr geenis võib esineda erineva pikkusega BCR-ABL1 valke, peamised on neist p190, p210 ja p230. Ägeda lümfoidleukeemia (ALL) korral on tihti tegemist liitvalguga BCR::ABL1 p190. Kroonilise müeloidleukeemia (KML) korral esineb enamasti BCR::ABL1 p210.

Kuna Philadelphia kromosoomi esinemisest sõltub prognoos ning ravi, siis on selle määramine olulise tähtsusega.

BCR::ABL1 liitvalgu olemasolul on võimalik kasutada väga efektiivset ravi türosiinkinaasi inhibiitoritega (imatiniib, nilotiniib, dasatiniib jt), mis inhibeerivad valikuliselt BCR::ABL1 kinaasi aktiivsust. Molekulaarse ravivastuse jälgimiseks mõõdetakse BCR::ABL1 mRNA taset kvantitatiivse reaalaja polümeraasi ahelreaktsiooniga. Analüüsi regulaarne kordamine aitab kaasa retsidiivi varasele avastamisele.

Ühendlaboris teostatakse BCR::ABL1 p210 (KML) analüüsi vastavalt rahvusvaheliste standardiseerimisprogrammide (European LeukemiaNet) poolt välja töötatud juhistele ja nõuetele ning kogu protsess on standardiseeritud EUTOS for CML rahvusvahelise programmi raames. Ühendlaboris on võimalik tuvastada BCR::ABL1 transkripte tasemel vähemalt MR4.5.

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 48 tundi

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 5 tööpäeva jooksul

Analüüsimeetod: kvantitatiivne reaalaja polümeraasi ahelreaktsioon (PCR)

Vastuse vorm: BCR::ABL1 mRNA ja kontrollgeeni ABL1 mRNA suhe rahvusvahelise skaala protsentides (%IS).

Näidustus ja kliiniline tähendus

Kroonilise müeloidleukeemia kahtlustusel diagnoosi täpsustamine, mõõdetava residuaalse haiguse ja ravi tulemuslikkuse jälgimine ning retsidiivi kiire tuvastamine.

Ravi efektiivsuse jälgimiseks teostatakse PCR analüüsi reeglina iga kolme kuu tagant. Pärast täieliku molekulaarse ravivastuse saavutamist (BCR::ABL1 mRNA negatiivne) võib analüüsi teostada harvemini.

Oluline molekulaarne ravivastus (Major Molecular Response ehk MMR) on saavutatud siis, kui saadud väärtus on < 0,1%(IS).

Kui BCR::ABL1 transkript (mRNA) ei ole tuvastatav, siis lisatakse vastusesse ka analüüsi tundlikkuse ehk molekulaarse ravivastuse tase: MR4.0 = BCR::ABL1 ≤ 0,01%(IS); MR4.5 = BCR::ABL1 ≤ 0,0032%(IS) või MR5.0 = BCR::ABL1 ≤ 0,001%(IS).

21.08.2017 omistati Ühendlaborile EUTOS MR4.5 sertifikaat, mis tõendab, et labor on võimeline tuvastama BCR::ABL1 transkripte tasemel MR4.5.

Analüüs on akrediteeritud Eesti Akrediteerimiskeskuse poolt.

BCR::ABL1 kinaasi domeeni mutatsioonid (sekveneerimine) (XXX-BCR::ABL1 seq)

Immuunanalüüsi osakond

Mutatsioonid BCR::ABL1 kinaasi domeenis võivad põhjustada leukeemia raviks kasutatavate türosiinkinaasi inhibiitorite (TKI) suhtes resistentsust. Valdavalt on tegemist kasvajarakkudes tekkivate punktmutatsioonidega, mille mõju erinevate TKI-de efektiivsusele on väga erinev. Kõige tuntum mutatsioon on T315I, mis põhjustab resistentsust kõikide esimese ja teise põlvkonna TKI-de suhtes. Info erinevate mutatsioonide ning nende mõju kohta TKI-dele täieneb pidevalt.

Antud analüüsi teostamiseks peab BCR::ABL1 mRNA tase olema vähemalt 0,1%IS. 

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 48 tundi

Analüüsimeetod: BCR::ABL1 kinaasi domeeni sekveneerimine Sanger meetodil (~ aa220–420)

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 5 tööpäeva jooksul

Vastuse vorm

BCR::ABL1 kinaasi domeenis mutatsioone ei leitud.

BCR::ABL1 kinaasi domeenis leitud mutatsioon (mutatsiooni(de) kirjeldus).

Näidustus ja kliiniline tähendus

BCR::ABL1 kinaasi domeeni mutatsioonide määramine on näidustatud Philadelphia kromosoomi ehk t(9;22) BCR::ABL1 olemasoluga ning TKI ravi saavatel patsientidel, kes ei saavuta optimaalset ravitulemust või kui BCR::ABL1 mRNA tase tõuseb ravi ajal üle MMR (Major Molecular Response) piiri ehk 0,1%(IS).

Vastavalt leitud mutatsiooni(de) tüübile võib olla vajalik muuta kasutatavat ravimit, kohandada ravimi doosi või rakendada alternatiivseid ravimeetodeid. Mutatsioonide olemasolu ei ole püsiv; kasvajarakkudes võivad tekkida uued mutatsioonid ning erinevad kloonid võivad ravi tulemusel tekkida ning kaduda.

ALL – äge lümfoidleukeemia

t(12;21) ETV6::RUNX1 translokatsiooni mRNA
(B,Bm-t(12;21) ETV6::RUNX1 mRNA)

Immuunanalüüsi osakond

Translokatsioon 12;21(p13;q22) on kõige levinum translokatsioon lapseea B-rakulise ägeda lümfoidleukeemia (ALL) korral. Translokatsiooni tulemusena tekib kimäärne liitvalk ETV6::RUNX1T1. Lapseea ägeda müeloidleukeemia (AML) puhul translokatsiooni (12;21) praktiliselt ei esine ning täiskasvanute ALL-i puhul on esinemine harv. RUNX1 geen on transkriptsiooni aktivatsiooni geen, kuid tekkinud translokatsiooni tulemusena muutub see transkriptsiooni repressoriks. t(12;21) positiivsetel patsientidel on suhteliselt hea prognoos.

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 48 tundi

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 5 tööpäeva jooksul

Analüüsimeetod: kvantitatiivne reaalaja polümeraasi ahelreaktsioon (PCR)

Vastuse vorm: ETV6::RUNX1 mRNA ja kontrollgeeni ABL1 mRNA suhe protsentides.

Näidustus ja kliiniline tähendus

Ägeda leukeemia kahtlusel diagnoosi täpsustuseks, prognoosi hindamiseks. Mõõdetava residuaalse haiguse ja ravi tulemuslikkuse jälgimine ning molekulaarse retsidiivi tuvastamine enne kliiniliste haigusnähtude ilmnemist.

t(12;21) ETV6::RUNX1 mRNA 0%: translokatsioon ei ole tuvastatav. Kui analüüs oli eelnevalt positiivne, siis on mutatsiooniga rakkude arv ravi tulemusel tõenäoliselt langenud alla testi tundlikkuse taseme.

Kimäärsuse markerite sõeluuring
Kimäärsuse marker 1
Kimäärsuse marker 2

Immuunanalüüsi osakond

Geneetiline kimäär on organism, kellel on kaks või enam geneetiliselt erinevat rakupopulatsiooni ehk siis erinevate genoomidega rakke. Kimäärid võivad tekkida looduslikult (ema vereringes loote rakud; loodete „kokkusulamine”) või tehislikult (vereülekanne, tüvirakkude või organite siirdamine).

Luuüdi ja tüvirakkude siirdamise järgselt on võimalik erinevate geneetiliste markerite määramise abil kindlaks teha retsipiendi ja doonori rakkude suhet ning selle kaudu hinnata siirdamise edukust ning avastada varakult äratõukereaktsioonide tekkimist.

Ühendlaboris kasutatavasse analüüsi kuulub 39 erinevat geneetilist markerit, mille abil on võimalik eristada erineva päritoluga genoome. Geneetilisteks markeriteks on valitud erinevad bialleelsed insertsioonid/deletsioonid vm inimgenoomi sagedased polümorfismid.

Siirdamiseelne kimäärsuse sõeluuring

Esmase sõeluuringu käigus teostatakse doonorile ning retsipiendile siirdamiseelselt võrdlusanalüüs, et teha kindlaks markerid, mille osas nende genoomid üksteisest erinevad. Informatiivne marker on selline, mis on olemas retsipiendil ning puudub doonoril. Korduva siirdamise korral tuleb leida sellised markerid, mida pole ühelgi doonoril.

Siirdamisjärgne kimäärsuse markerite kvantitatiivne analüüs

Siirdamisjärgselt määratakse konkreetse markeri DNA hulk retsipiendi veres ning võrreldakse selle hulka siirdamiseelselt võetud proovimaterjali sama markeri DNA hulgaga. Erinevate proovimaterjalide DNA kogus normaliseeritakse kontrollgeeni abil. Kuna vähirakkudes võib toimuda DNA fragmenteerumist või ümberkorraldusi, jälgitakse võimaluse korral alati kahte informatiivset markerit, et välistada vale-negatiivsed tulemused mõne markeri kadumise tõttu.

Näiteks markeri tulemus 5% tähendab seda, et siirdamisjärgselt on retsipiendi enda DNA ehk genoomi hulk kogu DNA-st 5%. Ülejäänud 95% kogu DNA-st on pärit doonori genoomist. Analüüsi tundlikkus sõltub DNA hulgast reaktsioonis.

Uuritav materjal, selle võtmine, saatmine ja säilitamine

Siirdamiseelseks kimäärsuse sõeluuringuks on vaja nii retsipiendi kui doonori verd!

KatsutiK2E/K3E-katsuti (lilla kork)
Analüüsitav kogusVeri 6 mL, luuüdi 2 mL
Säilivus2–8 °C 7 päeva

Analüüsi tegemise aeg: tööpäeviti, vastus 3 tööpäeva jooksul

Analüüsimeetod: reaalaja polümeraasi ahelreaktsioon (RT-PCR)

Vastuse vorm

Siirdamiseelne sõeluuring: Informatiivsed markerid valitud

Siirdamisjärgne kimäärsuse markerite analüüs: retsipiendi DNA hulk protsentides.

Näidustus ja kliiniline tähendus

Allogeense vereloome tüvirakkude siirdamise järgselt kimäärsuse staatuse (täielik või osaline kimäärsus) ja taseme (osalise kimäärsuse korral stabiilne või muutuv kimäärsuse tase) regulaarne hindamine võimaldab varakult avastada GVHD (graft-versus-host disease), HVGD (host-versus-graft disease) ja retsidiivi tekkimist.

Vt ka: Luuüdi aspiraadi tsütoloogiline, tsütokeemiline ja histoloogiline kompleksuuring
Vereloomehaiguste immuunfenotüpeerimine

Koostajad: Maria Keernik, Ingrid Tagen
Muudetud 21.03.2023

linkedin facebook pinterest youtube rss twitter instagram facebook-blank rss-blank linkedin-blank pinterest youtube twitter instagram